on-カラム Refolding 法を実施する前に：検討事項チェックリスト

on-カラム法を試す前に、以下の条件をクリアしているかどうか確認すること。

• 目的蛋白質に His-tag が付いている
• Ni-NTA（QIAGEN 社製）のような IMAC 担体が研究室にある
• XK カラム（Cytiva 社製）のような空カラムが研究室にある
• 濃度勾配がつけられる FPLC または HPLC システムが研究室にある
• 目的蛋白質は、pH 7～8くらいの条件で Refolding が可能である
• 目的蛋白質は Cys を含まない

まず、カラムへの固定に His-tag を利用するので、His-tag 蛋白質であることが必須である。そして、IMAC 担体やカラム、Refolding のための FPLC システム等が必要である。これらの器具・機器は、組換え型蛋白質の精製を実施している研究室では保有している場合が多いが、比較的高価な品なので、on-カラム法をトライするためだけに新規購入するのは高リスクである。また、IMAC の性質上、pH 7～8くらいの条件で Refolding できる蛋白質でなければならない。

この手法の一番の問題点は、Cys を含む蛋白質では実施が極めて困難なことである（文献上では成功例がいくつもある）。含 Cys 蛋白質の Refolding には酸化・還元反応のコントロールが重要であるが、IMAC は原則還元条件下では行えない。最近では比較的還元剤に強い担体が販売されているが、それでも長時間（overnight）、変性剤存在下での使用に耐える商品は、筆者がこれまで色々試した範囲では無かった。希釈法で上手くいかない蛋白質の多くが Cys を含むだけに、この欠点はかなり痛いが、on-カラム Refolding 法の利点・成功例（文献1–10）や総説（文献11, 12）等を以下に挙げるので、実施の参考にして頂きたい。

on-カラム Refolding 法の利点

• カラムに固定することで蛋白質の分子間に一定の距離が確保できる。従って、Refolding 中間体どうしが結合して起こる凝集反応が阻止できる。
• Refolding ステージごとに温度や buffer の組成を自在に変えることができる。例えば、初期段階では界面活性剤を添加し、4℃で Refolding させることで急激な構造形成による mis-folding を抑制する。その後は25℃にて界面活性剤と変性剤を速やかに減らし、迅速に Refolding を進めるなど、条件をいろいろと変えることができる。
• バッチ法で担体を繰り返し利用するので、ゲル濾過のようにカラムを壊す心配がない。

蛋白質名（UniProt 番号, 酵素番号, アミノ酸残基数, 参考文献）

• human prion protein（P04156, 253AA, 文献1）
• bovine prion protein（P10279, 264AA, 文献2）
• Interleukin-4（P05112, 153AA, 文献3）
• DevS histidine protein kinase（P95194, EC 2.7.3.-, 578AA, 文献4）
• Glutamyl-tRNA reductase（P0A6X1, EC 1.2.1.70, 418AA, 文献5）
• Tocopherol transfer protein（P49638, 278AA, 文献6）
• glucosidase（P49235, EC 3.2.1.21, 566AA, 文献7）
• exopolyphosphatase（Q7Z032, EC 3.6.1.11, 383AA, 文献8）
• N-Carbamoyl-D-amino acid amidohydrolase（Q44185, EC 3.5.1.77, 304AA, 文献9）
• Streptomyces griseus HUT6037 chitinase（EC 3.2.1.14, 265AA, 文献10）

試薬・器具

• Ni-NTA agarose（QIAGEN 社製30230など）[*1]
• XK16/20 カラム（Cytiva 社製 28988937）[*2]
• グラスフィルター：内径 67 mm くらいが使いやすい
• グアニジン塩酸塩（Gdn-HCl, 富士フイルム和光純薬株式会社製 077-02435 など）[*3]
• buffer A：6 M Gdn-HCl-10 mM imidazole-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*4][*5]
• buffer B：6 M Gdn-HCl-300 mM imidazole-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer C：6 M Gdn-HCl-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer D：10% glycerol-6 M Gdn-HCl-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*6][*7]
• buffer E：10% glycerol-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*6][*7]
• buffer F：10 mM imidazole-20 mM NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer G：300 mM imidazole-20 mM NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• Lysis buffer：20 mM Na-リン酸-0.5 M NaCl-10 mM imidazole-1 mM EDTA, pH 7.8
• Washing buffer：0.1% Triton X-100-20 mM Na-リン酸-0.1 M NaCl-10 mM imidazole, pH 7.8
• 塩化リゾチーム（SIGMA 社製 L2879 など）
• プロテアーゼインヒビターカクテル（Roche 社製 11-873-580-001 など）[*8]

実験手順の詳細

以下は Cys を含まない蛋白質で実施する場合の手順である。

I. 封入体の精製と変性

1. 10～15 g の菌体をよく冷やした Lysis buffer に懸濁し、プロテアーゼインヒビターカクテル（適量）と 40 mg の塩化リゾチームを加えて全量 40 mL となるよう調製する。これを、氷水上で30分間インキュベーションする。
2. 容器を氷水につけたまま超音波破砕機で菌体を破砕し、その後 3500 g で15分間遠心する。
3. 得られた不溶性画分を約 100 mL の Washing buffer に懸濁する。この時、Washing buffer は少しずつ加えて菌体がダマにならないようにする。ガラス棒やボルテックスミキサーを駆使しても均一に懸濁できない場合は、超音波破砕機を使う。
4. 遠心→沈殿画分の回収→Washing buffer への懸濁を5～10回繰り返して封入体を精製する。白い片栗粉のような沈殿物のみになれば OK。沈殿物の上に茶色のブヨブヨしたものが残っている場合は洗浄が不十分である。
5. 沈殿物を buffer F に懸濁し、遠心して沈殿画分を回収する。この洗浄操作を2回繰り返す。
6. 得られた沈殿画分をガラス棒等でかき混ぜてよくほぐしてから（重要！）、30 mL の buffer A を加え、素早くガラス棒とボルテックスミキサーを駆使してかき混ぜ沈殿を溶かす。少々沈殿が溶けずに残っても次のステップで溶けるので心配はない。
7. 遠沈管にフタをし、室温にて15～60分間シェーカー上でゆっくりと転がして蛋白質を変性させる。60分以上振とうしても沈殿が残る場合は超音波破砕機を使用してもよい。
8. 変性蛋白質溶液を 10000 g で20分間遠心し、上清をフタ付き瓶（250 mL くらいでガラスよりも樹脂製がよい）に回収する。これを4℃で保存し、16時間以内に次のステップへ進む。数日置く場合は、手順5が済んだ段階の沈殿を−25℃で保存する。

II. 変性状態での精製

9. Ni 付加済みの Ni-NTA agarose（約 50 mL, 以下 Ni-NTA と略する）をグラスフィルターにあけ、減圧しながら純水で洗浄する。
10. buffer A を 100 m 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で buffer が落ち切るのを待つ。この操作を2回繰り返す。
11. buffer A で洗った Ni-NTA を手順8で準備した変性蛋白質溶液に入れる。始めはスパテラを使って入れ、グラスフィルターやスパテラに残った Ni-NTA は洗瓶に入れた buffer A で洗い流して入れる。
12. 室温で30～60分間、シェーカー上で容器をゆっくりと転がして担体に His-tag 蛋白質を結合させる。
13. XK カラムを buffer A でリンスした後、上記担体を buffer A で洗いながらカラムに詰める。少々泡や隙間があっても問題ないので、手早く詰めること。
14. カラムを FPLC（または HPLC）システムに接続し、3ベッド容量の buffer A をカラムに流して担体を洗浄する。流速は、カラムの耐圧範囲であれば、5 mL/min くらいまで OK。
15. buffer B を流して His-Tag 蛋白質を溶出する。圧が許せば流速は 5 mL/min でよい。
16. 目的蛋白質に相当するピーク画分を手順8と同様のフタ付き瓶に回収する。その後、OD₂₈₀ などにより、蛋白質濃度を定量する。

III. 蛋白質の on-カラム Refolding

17. 手順16の蛋白質液を buffer C で10倍希釈し、imidazole 濃度を下げる。
18. 以下、手順9～14と同様にして蛋白質を Ni-NTA に結合し、カラムの準備をする。ただし、Ni-NTA の量は蛋白質量に応じて調整する。[*9][*10]
    また当然ながら、II で使用した Ni-NTA を未洗浄のまま使用してはならない。できれば前日までに、II と III で使用するに足る洗浄済 Ni-NTA を準備しておく。
19. FPLC システムに buffer D, buffer E をセットする。また、カラムと恒温槽を適当なチューブで繋いで、目的の温度セットにする。
20. 流速は 1～2 mL/min（または線流速 0.5～1 cm/min）で、2ベッド容量の buffer D をカラムに流す。
21. FPLC の濃度勾配プログラムを使って Gdn-HCl 濃度を徐々下げ、蛋白質を Refolding させる。[*11]
22. 流速 1～2 mL/min（または線流速 0.5～1 cm/min）で、2ベッド容量の buffer F をカラムに流す。
23. buffer G で His-Tag 蛋白質を溶出する。圧が許せば流速は 5 mL/min でよい。
24. 目的蛋白質に相当するピーク画分を回収し、イオン交換クロマトグラフィーなどで更に精製を進める。[*12]

Ni-NTA の洗浄

カラム上で蛋白質を Refolding させるため、相当量の mis-folding 蛋白質が非特異的相互作用で担体に結合する。よって担体は以下の手順で速やかに洗浄し、再生すること。ただし、蛋白質により、下記に示した NaOH での洗浄に加え、界面活性剤や酢酸、プロパノール等を用いた洗浄も必要な場合がある。また、「II. 変性状態での精製」で使用した Ni-NTA は、下記3, 4のステップを省略して洗浄すればよい。

試薬

• 0.3 M EDTA-Na-1 M NaCl, pH 8.0
• 0.5 M NaOH-1 M NaCl
• 0.1 M Na-リン酸-1 M NaCl buffer, pH 7.8
• 0.1 M \(\ce{NiSO4}\)

1. Ni-NTA をカラムからグラスフィルターへ移す。Ni-NTA は高価なので、洗瓶に入れた純水でカラムを洗い、極力無駄のないようグラスフィルターへ移す。
2. 0.3 M EDTA-Na-1 M NaCl（pH 8.0）を約 100 mL 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で液が落ち切るのを待つ。この操作を2回繰り返えす。Ni の青味が残っている場合は、更にこの操作を繰り返す。
3. 0.5 M NaOH-1 M NaCl を約 100 mL 注ぎ、手順2と同様の操作を2回繰り返えす。
4. 減圧しながら約 500 mL の 0.1 M Na-リン酸-1 M NaCl buffer で担体を洗う。
5. 減圧しながら純水で担体を十分に洗う。
6. 0.1 M \(\ce{NiSO4}\) を約 100 mL 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で液が落ち切るのを待つ。
7. 手順5と同様に洗浄する。
8. 1週間以内に使用する場合は4℃にてミリ Q 水中で保存する。しばらく使用しない場合は4℃にて20％エタノール中で保存する。

参考文献

1. Zahn R., et al, FEBS Lett., 417, 400–404 (1997)
2. Yin S-M., et al, Protein Expr. Purif., 32, 104–109 (2003)
3. Razeghifard MR, Protein Expr. Purif., 37, 180–186 (2004)
4. Saini DK., et al, Protein Expr. Purif., 25, 203–208 (2002)
5. Schauer S., et al, Protein Expr. Purif., 31, 271–275 (2003)
6. Panagabko C., et al, Protein Expr. Purif., 24, 395–403 (2002)
7. Zouhar J., et al, Protein Expr. Purif., 17, 153–162 (1999)
8. Lemercier G., et al, J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci., 786, 305–309 (2003)
9. Chen HM., et al, Biotechnol. Prog., 19, 864–873 (2003)
10. Oyeleye AO., et al, PLoS One, 15, e0241074 (2020)
11. Holzinger A., et al, QIAGEN News, 4, 14–15 (1996)
12. Jungbauer A., et al, Curr. Opin. Biotechnol., 15, 487–494 (2004)

改訂履歴

on-カラム Refolding 法を実施する前に：検討事項チェックリスト

on-カラム法を試す前に、以下の条件をクリアしているかどうか確認すること。

• 目的蛋白質に His-tag が付いている
• Ni-NTA（QIAGEN 社製）のような IMAC 担体が研究室にある
• XK カラム（Cytiva 社製）のような空カラムが研究室にある
• 濃度勾配がつけられる FPLC または HPLC システムが研究室にある
• 目的蛋白質は、pH 7～8くらいの条件で Refolding が可能である
• 目的蛋白質は Cys を含まない

まず、カラムへの固定に His-tag を利用するので、His-tag 蛋白質であることが必須である。そして、IMAC 担体やカラム、Refolding のための FPLC システム等が必要である。これらの器具・機器は、組換え型蛋白質の精製を実施している研究室では保有している場合が多いが、比較的高価な品なので、on-カラム法をトライするためだけに新規購入するのは高リスクである。また、IMAC の性質上、pH 7～8くらいの条件で Refolding できる蛋白質でなければならない。

この手法の一番の問題点は、Cys を含む蛋白質では実施が極めて困難なことである（文献上では成功例がいくつもある）。含 Cys 蛋白質の Refolding には酸化・還元反応のコントロールが重要であるが、IMAC は原則還元条件下では行えない。最近では比較的還元剤に強い担体が販売されているが、それでも長時間（overnight）、変性剤存在下での使用に耐える商品は、筆者がこれまで色々試した範囲では無かった。希釈法で上手くいかない蛋白質の多くが Cys を含むだけに、この欠点はかなり痛いが、on-カラム Refolding 法の利点・成功例（文献1–10）や総説（文献11, 12）等を以下に挙げるので、実施の参考にして頂きたい。

on-カラム Refolding 法の利点

• カラムに固定することで蛋白質の分子間に一定の距離が確保できる。従って、Refolding 中間体どうしが結合して起こる凝集反応が阻止できる。
• Refolding ステージごとに温度や buffer の組成を自在に変えることができる。例えば、初期段階では界面活性剤を添加し、4℃で Refolding させることで急激な構造形成による mis-folding を抑制する。その後は25℃にて界面活性剤と変性剤を速やかに減らし、迅速に Refolding を進めるなど、条件をいろいろと変えることができる。
• バッチ法で担体を繰り返し利用するので、ゲル濾過のようにカラムを壊す心配がない。

蛋白質名（UniProt 番号, 酵素番号, アミノ酸残基数, 参考文献）

• human prion protein（P04156, 253AA, 文献1）
• bovine prion protein（P10279, 264AA, 文献2）
• Interleukin-4（P05112, 153AA, 文献3）
• DevS histidine protein kinase（P95194, EC 2.7.3.-, 578AA, 文献4）
• Glutamyl-tRNA reductase（P0A6X1, EC 1.2.1.70, 418AA, 文献5）
• Tocopherol transfer protein（P49638, 278AA, 文献6）
• glucosidase（P49235, EC 3.2.1.21, 566AA, 文献7）
• exopolyphosphatase（Q7Z032, EC 3.6.1.11, 383AA, 文献8）
• N-Carbamoyl-D-amino acid amidohydrolase（Q44185, EC 3.5.1.77, 304AA, 文献9）
• Streptomyces griseus HUT6037 chitinase（EC 3.2.1.14, 265AA, 文献10）

試薬・器具

• Ni-NTA agarose（QIAGEN 社製30230など）[*1]
• XK16/20 カラム（Cytiva 社製 28988937）[*2]
• グラスフィルター：内径 67 mm くらいが使いやすい
• グアニジン塩酸塩（Gdn-HCl, 富士フイルム和光純薬株式会社製 077-02435 など）[*3]
• buffer A：6 M Gdn-HCl-10 mM imidazole-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*4][*5]
• buffer B：6 M Gdn-HCl-300 mM imidazole-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer C：6 M Gdn-HCl-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer D：10% glycerol-6 M Gdn-HCl-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*6][*7]
• buffer E：10% glycerol-0.1 M NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8 [*6][*7]
• buffer F：10 mM imidazole-20 mM NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• buffer G：300 mM imidazole-20 mM NaCl-20 mM Na-リン酸, pH 7.8
• Lysis buffer：20 mM Na-リン酸-0.5 M NaCl-10 mM imidazole-1 mM EDTA, pH 7.8
• Washing buffer：0.1% Triton X-100-20 mM Na-リン酸-0.1 M NaCl-10 mM imidazole, pH 7.8
• 塩化リゾチーム（SIGMA 社製 L2879 など）
• プロテアーゼインヒビターカクテル（Roche 社製 11-873-580-001 など）[*8]

実験手順の詳細

以下は Cys を含まない蛋白質で実施する場合の手順である。

I. 封入体の精製と変性

1. 10～15 g の菌体をよく冷やした Lysis buffer に懸濁し、プロテアーゼインヒビターカクテル（適量）と 40 mg の塩化リゾチームを加えて全量 40 mL となるよう調製する。これを、氷水上で30分間インキュベーションする。
2. 容器を氷水につけたまま超音波破砕機で菌体を破砕し、その後 3500 g で15分間遠心する。
3. 得られた不溶性画分を約 100 mL の Washing buffer に懸濁する。この時、Washing buffer は少しずつ加えて菌体がダマにならないようにする。ガラス棒やボルテックスミキサーを駆使しても均一に懸濁できない場合は、超音波破砕機を使う。
4. 遠心→沈殿画分の回収→Washing buffer への懸濁を5～10回繰り返して封入体を精製する。白い片栗粉のような沈殿物のみになれば OK。沈殿物の上に茶色のブヨブヨしたものが残っている場合は洗浄が不十分である。
5. 沈殿物を buffer F に懸濁し、遠心して沈殿画分を回収する。この洗浄操作を2回繰り返す。
6. 得られた沈殿画分をガラス棒等でかき混ぜてよくほぐしてから（重要！）、30 mL の buffer A を加え、素早くガラス棒とボルテックスミキサーを駆使してかき混ぜ沈殿を溶かす。少々沈殿が溶けずに残っても次のステップで溶けるので心配はない。
7. 遠沈管にフタをし、室温にて15～60分間シェーカー上でゆっくりと転がして蛋白質を変性させる。60分以上振とうしても沈殿が残る場合は超音波破砕機を使用してもよい。
8. 変性蛋白質溶液を 10000 g で20分間遠心し、上清をフタ付き瓶（250 mL くらいでガラスよりも樹脂製がよい）に回収する。これを4℃で保存し、16時間以内に次のステップへ進む。数日置く場合は、手順5が済んだ段階の沈殿を−25℃で保存する。

II. 変性状態での精製

9. Ni 付加済みの Ni-NTA agarose（約 50 mL, 以下 Ni-NTA と略する）をグラスフィルターにあけ、減圧しながら純水で洗浄する。
10. buffer A を 100 m 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で buffer が落ち切るのを待つ。この操作を2回繰り返す。
11. buffer A で洗った Ni-NTA を手順8で準備した変性蛋白質溶液に入れる。始めはスパテラを使って入れ、グラスフィルターやスパテラに残った Ni-NTA は洗瓶に入れた buffer A で洗い流して入れる。
12. 室温で30～60分間、シェーカー上で容器をゆっくりと転がして担体に His-tag 蛋白質を結合させる。
13. XK カラムを buffer A でリンスした後、上記担体を buffer A で洗いながらカラムに詰める。少々泡や隙間があっても問題ないので、手早く詰めること。
14. カラムを FPLC（または HPLC）システムに接続し、3ベッド容量の buffer A をカラムに流して担体を洗浄する。流速は、カラムの耐圧範囲であれば、5 mL/min くらいまで OK。
15. buffer B を流して His-Tag 蛋白質を溶出する。圧が許せば流速は 5 mL/min でよい。
16. 目的蛋白質に相当するピーク画分を手順8と同様のフタ付き瓶に回収する。その後、OD₂₈₀ などにより、蛋白質濃度を定量する。

III. 蛋白質の on-カラム Refolding

17. 手順16の蛋白質液を buffer C で10倍希釈し、imidazole 濃度を下げる。
18. 以下、手順9～14と同様にして蛋白質を Ni-NTA に結合し、カラムの準備をする。ただし、Ni-NTA の量は蛋白質量に応じて調整する。[*9][*10]
    また当然ながら、II で使用した Ni-NTA を未洗浄のまま使用してはならない。できれば前日までに、II と III で使用するに足る洗浄済 Ni-NTA を準備しておく。
19. FPLC システムに buffer D, buffer E をセットする。また、カラムと恒温槽を適当なチューブで繋いで、目的の温度セットにする。
20. 流速は 1～2 mL/min（または線流速 0.5～1 cm/min）で、2ベッド容量の buffer D をカラムに流す。
21. FPLC の濃度勾配プログラムを使って Gdn-HCl 濃度を徐々下げ、蛋白質を Refolding させる。[*11]
22. 流速 1～2 mL/min（または線流速 0.5～1 cm/min）で、2ベッド容量の buffer F をカラムに流す。
23. buffer G で His-Tag 蛋白質を溶出する。圧が許せば流速は 5 mL/min でよい。
24. 目的蛋白質に相当するピーク画分を回収し、イオン交換クロマトグラフィーなどで更に精製を進める。[*12]

Ni-NTA の洗浄

カラム上で蛋白質を Refolding させるため、相当量の mis-folding 蛋白質が非特異的相互作用で担体に結合する。よって担体は以下の手順で速やかに洗浄し、再生すること。ただし、蛋白質により、下記に示した NaOH での洗浄に加え、界面活性剤や酢酸、プロパノール等を用いた洗浄も必要な場合がある。また、「II. 変性状態での精製」で使用した Ni-NTA は、下記3, 4のステップを省略して洗浄すればよい。

試薬

• 0.3 M EDTA-Na-1 M NaCl, pH 8.0
• 0.5 M NaOH-1 M NaCl
• 0.1 M Na-リン酸-1 M NaCl buffer, pH 7.8
• 0.1 M \(\ce{NiSO4}\)

1. Ni-NTA をカラムからグラスフィルターへ移す。Ni-NTA は高価なので、洗瓶に入れた純水でカラムを洗い、極力無駄のないようグラスフィルターへ移す。
2. 0.3 M EDTA-Na-1 M NaCl（pH 8.0）を約 100 mL 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で液が落ち切るのを待つ。この操作を2回繰り返えす。Ni の青味が残っている場合は、更にこの操作を繰り返す。
3. 0.5 M NaOH-1 M NaCl を約 100 mL 注ぎ、手順2と同様の操作を2回繰り返えす。
4. 減圧しながら約 500 mL の 0.1 M Na-リン酸-1 M NaCl buffer で担体を洗う。
5. 減圧しながら純水で担体を十分に洗う。
6. 0.1 M \(\ce{NiSO4}\) を約 100 mL 注ぎ、スパテラで担体を傷めないよう軽く混ぜ、自然落下で液が落ち切るのを待つ。
7. 手順5と同様に洗浄する。
8. 1週間以内に使用する場合は4℃にてミリ Q 水中で保存する。しばらく使用しない場合は4℃にて20％エタノール中で保存する。

参考文献

1. Zahn R., et al, FEBS Lett., 417, 400–404 (1997)
2. Yin S-M., et al, Protein Expr. Purif., 32, 104–109 (2003)
3. Razeghifard MR, Protein Expr. Purif., 37, 180–186 (2004)
4. Saini DK., et al, Protein Expr. Purif., 25, 203–208 (2002)
5. Schauer S., et al, Protein Expr. Purif., 31, 271–275 (2003)
6. Panagabko C., et al, Protein Expr. Purif., 24, 395–403 (2002)
7. Zouhar J., et al, Protein Expr. Purif., 17, 153–162 (1999)
8. Lemercier G., et al, J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci., 786, 305–309 (2003)
9. Chen HM., et al, Biotechnol. Prog., 19, 864–873 (2003)
10. Oyeleye AO., et al, PLoS One, 15, e0241074 (2020)
11. Holzinger A., et al, QIAGEN News, 4, 14–15 (1996)
12. Jungbauer A., et al, Curr. Opin. Biotechnol., 15, 487–494 (2004)

改訂履歴